獨家技術
為每個問題提供專業解決方案
Easy 3D
超解析，超簡單
EASY 3D 模組的專利單一光路設計讓您可輕鬆獲得樣品特徵完整的三維結構。此外，EASY 3D 與任何低倍到高倍的物鏡兼容，可以校正 STED 光束中的像差，讓您以最佳方式完全自由地嵌入進行樣品成像。
EASY 3D
革命性的可編程SLM
成像的最佳幫手
EASY3D 設備使用可編程空間光調製器 (SLM) 來創建 2D 和 3D STED 顯微鏡所需的相位模式。同時，它還可用於校正 STED 光束的光學像差。
SLM 實現了革命性設計，僅使用一個 STED 光束而不是兩個單獨的 STED 光束，分別用於橫向 (XY) 和軸向 (Z) 解析度提昇。解析度提昇可以在純 XY 軸方向增強和主要 Z 軸方向增強之間進行調整。單光束設計淘汰了任何光束重組和校準，從而實現了出色的系統穩定性。
EASY 3D
光學像差控制，圖像更明亮
EASY 3D
單一光路設計，校正永成過去
EASY 3D 採用獨家單光束設計來承載 XYZ-STED。永遠完美對齊，無需校正。
在傳統的 3D STED 設計中，一條光束承載 XY-STED，另一條承載 Z-STED。兩條光束可能會分開，導致訊號失準及分辨率的損失。
EASY 3D
水鏡、油鏡、甘油鏡，依使用需求任意搭配
當使用油鏡對通過 13 μm 水進行測量時，會因為折射率不匹配，影像的螢光強度會顯著降低。導致無法形成清晰的圖像。
EASY 3D 設計允許您在實驗中更換物鏡並在 STED 模式下使用最合適的鏡頭。此外，您可以使用我們的自適應光學設備進一步校正所有光束中的像差。
EASY 3D
厚樣本、組織，從此不是問題
Abberior 空間光調製器 (SLM)
可達180µm的深層 3D STED 解析度
我們的可編程空間光調製器 (SLM) 的像差校正可使您在
樣品 180 µm 的深層獲得 3D STED 超解析成像！這只有在您根據樣本深度校正 Z-STED 零環形光束的情形下
才能實現。
EASY 3D
精細成像的最佳助手
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調整 XY 和 Z 的分辨率以適應您的成像問題
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可自由在水鏡、油鏡、甘油鏡中來回切換
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3D 解析度：至少可達 90 × 90 × 90 nm，常見為 75 × 75 × 75 nm
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2D 解析度：優於 30 × 30 nm
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像差校正：即使在樣品深處（> 20 μm）也能保持 STED PSF 的形狀
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任何 Abberior FACILITY 以上系統均可配備 EASY3D 設備
Service Name
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自適應照明技術
4%傳統光劑量
完美達成超解析
自適應照明技術可自動偵測現有觀察區域上明顯不存在結構的區域，並通過減少或關閉雷射照射，將樣品上的光劑量顯著降低多達兩個數量級。大大減少了光漂白的機率。
無論在共軛焦影像或超解析成像中，有無自適應照明技術會在影像上產生極大的差異。
自適應照明技術
何謂自適應照明
自適應照明技術包含三種相關但不同的技術：RESCUE、DYMIN 和 MINFIELD。它們的共同點是，對於掃描過程中的每個像素，會根據樣品的底層結構動態調整激發光，而不是無止盡地使用相同的雷射功率。圖像的暗區或失焦區域幾乎沒有受到照射，而存在螢光標記且處於焦點位置的區域則以 100% 的訊號和分辨率進行成像。這意味著激光只對在具有最大螢光效率及效果的地方進行照射，而不在其他地方。
自適應照明大大減少了光漂白，並能夠對 3D 成像或幾十幀影像進行長期測量，而傳統的超解析技術早已漂白了樣品。
自適應照明是減少樣品光劑量的第一選擇。
RESCUE
RESCUE
解決活細胞成像所面臨的問題
對於掃描期間的每個像素，RESCUE（Reduction of State transition Cycles）會短暫探測是否有任何結構，如果沒有，則立即關閉照明。這種快速探測通常在共軛焦模式下完成，時間約為像素總停留時間的 10%（“共軛焦探測”）。只有在該探測步驟期間檢測到訊號時，照明和檢測才會在剩餘像素停留時間內繼續進行。
在一個典型的樣本中，假定 80% 的區域是暗區，RESCUE 可將樣本接受的 STED 光子數量減少 80%，接受的激發光子數量減少 70%，這其中不會有任何分辨率或訊號損失。進一步與DYMIN 相結合，並使用我們的 Pulsed Laser 而不是 Continuous-Wave Lasers，您可以將光 劑量顯著降低至百分之幾。這對於活細胞與 3D 成像非常重要。
RESCUE
RESCUE 成像記錄極大化
當記錄一個體積（即一組堆疊的 2D 圖像）時，效果更加顯著，因為 STED 環形圈（受衍射限制）在 Z 軸方向的尺寸明顯大於單個圖像的厚度。因此，記錄一張圖像的同時，也代表著 STED 額外記錄了另外20張圖像。正因為如此，使用 RESCUE 獲得的增益在體積成像中可放大 20 倍。
DYMIN
DYMIN 漸進式精密偵測
在 RESCUE 之後，DYMIN（動態最小值）進一步減少了用最大 STED 功率照射的樣品區域。這是通過在探測結構時同時使用激發光及少量 STED Laser，並以多步方式來實現。與 RESCUE 一樣，如果在第一步中未檢測到結構，則關閉照明。但如果存在結構，接下來將施加少量的 STED 功率以提高解析度，從而提高探測靈敏度。其關鍵在於，小的 STED 功率已能快速顯著的提高解析度，這意味著只需很少的額外照射，就可以獲得更多關於螢光結構精確位置的訊息。只有在連續提高 STED 功率以確認當前掃描具有樣品結構時，才應用全分辨率功率，否則，在剩餘的像素時間內將立即關閉光照。這種以增加分辨率的漸進式探測能減少總體光漂白達好幾個數量級。帶來的好處是訊號及光學解析度都有顯著提昇。
DYMIN 極大地擴展了成像可能性
DYMIN 亦可支援長時間量測
DYMIN
DYMIN 成像實證
使用 EASY3D 和 DYMIN 對比傳統的 STED 顯微鏡記錄哺乳動物細胞核的 3D 堆棧圖。圖中顯示 XZ 切面和堆棧採集後的共軛焦圖像，可見 DYMIN 顯著地減少了漂白。請注意，DYMIN 使我們能夠以卓越的分辨率和訊號獲取完整的堆棧。圖中顯示的是在Vero細胞中用抗體標記的核孔複合物蛋白 (nup153)。
有使用與未使用 DYMIN 的 3D Stacks
在沒有使用和有使用 DYMIN 的情況下，使用共軛焦所拍攝的體積記錄。
DYMIN
DYMIN 成像實證
DYMIN 以非凡的信噪比非常清晰地分辨出血影蛋白環形結構。圖示為原代海馬神經元（體外培養 22 天）所顯示出沿遠端軸突中呈特徵性 ~192 nm 間隔週期分布的 βII 血影蛋白。使用染劑：Abberior STAR 635P，激發光：635 nm，STED：775 nm。樣品由 Elisa D'Este (MPIbpc) 提供。
MINFIELD
MINFIELD 無光子STED技術
MINFIELD 是另一種只 在需要時才將光束投射於樣品的照明方式。 MINFIELD 完全避免 STED 環形圈對整個視野進行掃描，而是只使用低功率的 STED 環形圈中央孔洞來掃描螢光結構。這讓成像區域必須小於環形圈中的衍射限制孔，因此帶來了 STED 世界中無可比擬的分辨解析度。
MINFIELD
2D MINFIELD
圖示為 MINFIELD 應用在人類免疫缺陷病毒 1 型 (HIV-1)。為共軛焦與 MINFIELD 圖像，視野大小為 160 nm。圖像來自於 J. Hanne 等人所拍攝。 “Stimulated Emission Depletion Nanoscopy Reveals Time-Course of Human Immunodeficiency Virus Proteolytic Maturation” ACS Nano 10, 8215-8222, 2016.
下圖為 gp210 和網格蛋白的成像示例。2D MINFIELD 在 gp210 和網格蛋白上呈現，MINFIELD 大小均為 200 nm。
3D MINFIELD
3D MINFIELD 呈現在直式 DNA 奈米尺上，間距為 91 nm，XZ 視圖。視野大小為 180 nm x 300 nm 的共軛焦和 MINFIELD 圖像。
